CTCとctDNAの違いとは?リキッドバイオプシーで解析対象となる成分を比較

リキッドバイオプシー(液体生検)は、血液などの体液から腫瘍に関連する情報を得る検査として注目を集めています。なかでもCTC(血中循環腫瘍細胞)とctDNA(血中循環腫瘍DNA)は、代表的な解析対象です。
どちらも採血だけで腫瘍の手がかりをつかめるという共通点がありますが、両者は由来も検出方法もまったく異なります。
この記事では、CTCとctDNAの違いを基礎からわかりやすく整理し、それぞれの特徴や向いている用途を比較します。「自分に合った検査はどちらなのか」を考えるヒントとして、ぜひ最後までお読みください。
リキッドバイオプシーが注目される背景と血液検査で癌を調べる時代
従来の組織生検(腫瘍の一部を針などで採取する検査)は、体への負担が大きく、何度も繰り返しにくいという問題を抱えていました。リキッドバイオプシーは採血だけで腫瘍由来の成分を調べられるため、患者さんの負担を大幅に減らせます。
組織生検だけでは見えなかった腫瘍の「今」を血液から読み取る
組織生検は、腫瘍の一部を直接採取して調べるため診断精度が高い手法です。ただし、固形腫瘍の内部には遺伝子的に異なる細胞集団が混在しており、1か所だけの組織では腫瘍全体の姿を把握しきれないことがあります。
リキッドバイオプシーでは、血液中に流れ出た腫瘍由来の成分を捉えるため、腫瘍全体の多様性を反映しやすいとされています。転移巣を含む複数の部位から放出された情報を一度の採血で受け取れる点が、大きな特長でしょう。
採血で得られる腫瘍由来成分にはどんな種類があるのか
血液中には、腫瘍から剥がれ落ちた細胞や、細胞が壊れる際に放出されるDNA断片など、さまざまな成分が含まれています。
代表的なものとして、CTC(血中循環腫瘍細胞)、ctDNA(血中循環腫瘍DNA)、そしてエクソソーム(細胞外小胞)の3つが挙げられます。
| 解析対象 | 由来 | 主な特徴 |
|---|---|---|
| CTC | 腫瘍から血中に放出された生きた癌細胞 | 細胞そのものを解析できる |
| ctDNA | 癌細胞のアポトーシスや壊死で放出されたDNA断片 | 遺伝子変異を検出しやすい |
| エクソソーム | 癌細胞が分泌する小さな膜構造体 | DNA・RNA・タンパク質を内包 |
リキッドバイオプシーが臨床で広がりつつある理由
リキッドバイオプシーの臨床応用が進んだ背景には、次世代シーケンシング(NGS)やデジタルPCRといった高感度の解析技術が飛躍的に進歩したことがあります。ごく微量の腫瘍由来成分でも正確に読み取れるようになり、実用化への道が開けました。
加えて、採血という低侵襲な方法で繰り返し検査ができるため、治療効果の経時的なモニタリングにも向いています。こうした利点から、臨床試験や一部の実臨床でリキッドバイオプシーの活用が進んでいるのです。
CTC(血中循環腫瘍細胞)とは何か|癌細胞そのものが血液中を流れている
CTC(Circulating Tumor Cell)は、原発巣や転移巣から血管内に侵入し、血液の流れに乗って全身を循環している腫瘍細胞そのものです。1mLの血液中に含まれる白血球はおよそ数百万個ですが、CTCはわずか数個程度しか存在せず、非常にまれな細胞といえます。
CTCが血液中に放出される仕組みと転移との関係
腫瘍細胞が血管の内側へ侵入する現象を「イントラバセーション(血管内浸潤)」と呼びます。この際、癌細胞は上皮間葉転換(EMT)と呼ばれる変化を経て、移動能力を獲得すると考えられています。
血管に入ったCTCは、血流中の物理的なストレスや免疫細胞の攻撃にさらされます。生き残ったCTCが遠隔臓器に到達し定着すると、転移巣を形成する可能性があるため、転移の早期把握においてCTCの検出は大きな意味を持ちます。
CTCの検出にはどんな技術が使われるのか
CTCを検出するためには、まず大量の血液細胞の中からごくわずかなCTCを分離・濃縮する必要があります。代表的な方法は、EpCAM(上皮細胞接着分子)などの表面マーカーを利用して抗体で捕捉する免疫親和性法です。
一方で、CTCのサイズが正常な血球より大きいことを利用したフィルトレーション法や、マイクロ流体デバイスを用いた分離技術も開発されています。どの方法を選ぶかによって感度や特異度が変わるため、用途に応じた選択が求められます。
CTCを調べるとわかること|遺伝子・タンパク質・形態の多面的な情報
CTCは生きた細胞として回収できるため、遺伝子解析だけでなくタンパク質発現や細胞形態の観察も行えます。単一細胞レベルでのゲノム解析やトランスクリプトーム解析により、腫瘍の不均一性(ヘテロジェニティ)を直接評価できる点が強みです。
さらに、回収したCTCを培養して薬剤感受性試験に用いる研究も進んでおり、個々の患者さんに合った治療法の選択に役立つ可能性が示されています。
| 検出技術 | 原理 | 代表例 |
|---|---|---|
| 免疫親和性法 | 表面マーカー(EpCAMなど)を抗体で捕捉 | CellSearch |
| フィルトレーション法 | 細胞サイズの違いでCTCを分離 | ISET |
| マイクロ流体デバイス | 微細な流路構造でCTCを選別 | CTC-iChip |
ctDNA(血中循環腫瘍DNA)とは何か|腫瘍の遺伝子情報が血液中に漂う断片
ctDNA(Circulating Tumor DNA)は、癌細胞が壊れたりアポトーシス(計画的な細胞死)を起こしたりする際に血液中へ放出される、腫瘍由来のDNA断片です。血中に存在するcfDNA(セルフリーDNA=細胞外遊離DNA)の一部であり、腫瘍特有の遺伝子変異情報を含んでいます。
ctDNAはどのように血液中に放出されるのか
腫瘍細胞が増殖と死滅を繰り返す過程で、壊死やアポトーシスによって細胞内のDNAが血中に流出します。放出されたctDNA断片は一般に150〜200塩基対程度と短く、血中での半減期もおよそ数十分から2時間ほどとされています。
この半減期の短さは、ctDNAが腫瘍の「今の状態」を鋭敏に反映するバイオマーカーであることを意味しています。治療の効果が出れば速やかに減少し、再発すると再び増加するため、リアルタイムなモニタリングへの応用が期待されています。
ctDNAの解析に用いられる主な検査技術
ctDNAの検出には、ごく微量の変異を高感度にとらえる技術が必要です。代表的な手法としては、ドロップレットデジタルPCR(ddPCR)や、BEAMing法、そして次世代シーケンシング(NGS)を応用したCAPP-SeqやTAm-Seqなどが挙げられます。
| 解析技術 | 感度 | 特徴 |
|---|---|---|
| ddPCR | 0.01〜1.0%程度の変異を検出可能 | 既知の変異を高感度に定量 |
| BEAMing | 同等の高感度 | 既知変異のスクリーニングに適する |
| NGS系(CAPP-Seqなど) | 幅広い変異を網羅的に検出 | 未知の変異も同時に発見できる |
ctDNA検査で得られる情報は遺伝子変異の「地図」に近い
ctDNAを解析すると、点変異やコピー数異常、遺伝子融合といった腫瘍特有のゲノム情報を把握できます。とくにEGFR変異やKRAS変異など、分子標的薬の選択に直結する情報を血液から取得できる点は臨床的に大きなメリットです。
ただし、ctDNAはあくまでDNA断片であるため、タンパク質発現の情報や細胞の形態は得られません。遺伝子レベルの変化に特化した検査であることを理解しておく必要があります。
CTCとctDNAの違いを項目ごとに比較する|由来・検出法・得られる情報の差
CTCとctDNAはどちらもリキッドバイオプシーの主要ターゲットですが、実体がまったく異なります。CTCは「生きた細胞」であり、ctDNAは「壊れた細胞から出たDNA断片」です。この根本的な違いが、検出方法にも得られる情報にも大きく影響しています。
由来と実体の違い|細胞か、DNA断片か
CTCは腫瘍から血管内に入り込んだ生存細胞であり、核・細胞質・細胞膜など細胞としての構造を保っています。一方のctDNAは、癌細胞が壊死やアポトーシスを経て放出した短いDNA断片であり、細胞としての構造はありません。
この違いにより、CTCでは細胞そのものの培養や機能評価が可能ですが、ctDNAではDNA配列の読み取りに限定されます。どちらの情報がほしいかによって、適した検査が変わってくるでしょう。
検出のしやすさと感度はどう違うのか
CTCは血液1mL中に数個と極めてまれであり、確実に回収するには高度な分離技術と十分な血液量が必要です。一方、ctDNAは血漿中に溶け出したDNA断片を対象にするため、比較的少量の血液サンプルからでも検出が可能とされています。
感度に関しては、ctDNAのほうが高いケースが多く報告されています。とくに腫瘍量が少ない早期癌や微小残存病変(MRD)の検出においては、ctDNA解析が有利とされる傾向があります。
得られる情報の幅に決定的な差がある
CTCは細胞レベルの解析が可能なため、遺伝子だけでなくタンパク質発現パターンや細胞形態、さらには薬剤感受性の評価まで行えます。腫瘍のヘテロジェニティを単一細胞レベルで調べられる点は、ctDNAにはない強みです。
ctDNAの強みは、遺伝子変異やメチル化パターンを網羅的に読み取れることにあります。とくに、治療標的となるドライバー変異の同定や、耐性変異の出現をモニタリングする用途ではctDNAが力を発揮します。
| 比較項目 | CTC | ctDNA |
|---|---|---|
| 実体 | 生きた腫瘍細胞 | 腫瘍由来のDNA断片 |
| 血中での存在量 | 極めて少数(1mLあたり数個) | cfDNA中のごく一部 |
| 検出感度 | やや低い(まれな細胞を探す必要) | 比較的高い(PCRやNGSで増幅可能) |
| 得られる情報 | 遺伝子・タンパク質・形態・薬剤感受性 | 遺伝子変異・メチル化・コピー数異常 |
| 半減期 | 数時間〜数日 | 数十分〜約2時間 |
| 繰り返し検査 | 可能だが技術的ハードルが高い | 比較的容易 |
リキッドバイオプシーにおけるCTCとctDNAの使い分け|臨床での応用場面
CTCとctDNAにはそれぞれ得意な領域があり、臨床の場面に応じた使い分けが大切です。どちらか一方が万能というわけではなく、目的に合った解析対象を選ぶことで、より正確な判断につなげられます。
治療効果のモニタリングにはctDNAが向いている
ctDNAは半減期が短いため、治療の効果が腫瘍に及ぶとすみやかに血中濃度が下がります。逆に、治療中に再びctDNA値が上昇すれば、早い段階で再発や耐性獲得を示唆できます。
こうしたリアルタイム性の高さから、分子標的薬や免疫療法の効果判定にctDNAモニタリングを活用する臨床研究が数多く進行中です。非小細胞肺癌や大腸癌、乳癌などで有用性を示すデータが蓄積されつつあります。
転移リスクの評価にはCTCの数が手がかりになる
CTCの数は予後と関連があることが複数の研究で示されてきました。とくに転移性乳癌において、治療前のCTC数が一定の閾値を超える場合は無増悪生存期間や全生存期間が短くなる傾向があり、予後予測の指標として注目されています。
| 臨床場面 | 向いている解析対象 | 理由 |
|---|---|---|
| ドライバー変異の同定 | ctDNA | 遺伝子変異をNGSで網羅的に検出できる |
| 治療効果のモニタリング | ctDNA | 半減期が短くリアルタイムに反映される |
| 転移リスクの予後予測 | CTC | CTC数と予後の関連が臨床研究で示されている |
| 薬剤感受性の事前評価 | CTC | 生きた細胞を培養して薬剤試験が可能 |
| 微小残存病変(MRD)の検出 | ctDNA | 高感度なPCR/NGSで微量な変異を捉えられる |
CTC解析が真価を発揮する場面
CTCは細胞レベルの情報を直接提供できるため、薬剤耐性が生じる仕組みの解明や、腫瘍の上皮間葉転換(EMT)状態の評価に力を発揮します。たとえば、CTC上のタンパク質マーカーの変化を追跡することで、治療中に腫瘍がどのように性質を変えているかを観察できる可能性があります。
加えて、CTC由来のオルガノイド(ミニ臓器モデル)を培養する研究も進んでおり、患者さん個人に合った薬剤スクリーニングへの応用が期待されています。
CTCとctDNAを組み合わせる検査はなぜ有望なのか
CTCとctDNAは得られる情報の性質が異なるため、両者を組み合わせることで腫瘍のより包括的な理解につなげられると考えられています。片方だけでは見落としてしまう変化を、もう片方が補完するという相補的な関係です。
CTCとctDNAの弱点を互いにカバーし合える
ctDNAは遺伝子変異の検出感度が高い反面、タンパク質や細胞レベルの情報は得られません。逆にCTCは細胞そのものの情報が豊富ですが、検出率が低くすべての患者さんで十分な数を回収できるとは限りません。
両方の解析を同じ血液サンプルから並行して行えば、遺伝子変異の同定はctDNAで、タンパク質発現の確認はCTCで、といった合理的なアプローチが可能になります。
マルチアナライト解析が癌の個別化医療を前進させる
リキッドバイオプシーの研究領域では、CTC・ctDNA・エクソソームなど複数の解析対象を同時に調べるマルチアナライト解析の開発が進んでいます。異なる角度から腫瘍情報を集約することで、診断精度や治療方針の決定力が高まると期待されています。
たとえば、ctDNAで変異を検出し、CTCでその変異がタンパク質レベルでどう影響しているかを確認する、というワークフローが将来的に実現すれば、個別化医療の精度は大きく向上するでしょう。
実用化に向けて残されている課題
マルチアナライト解析は魅力的なアプローチですが、検査手順の標準化やコスト面での課題がまだ残っています。CTCの分離とctDNAの抽出では必要な前処理が異なるため、効率的なワークフローの構築が求められます。
また、複数のデータを統合して臨床判断につなげるためのバイオインフォマティクス基盤も整備途上です。大規模な臨床試験によるエビデンスの蓄積とともに、こうした技術的な基盤づくりが今後の大きなテーマとなっています。
- CTCは細胞レベル、ctDNAは遺伝子レベルの情報をそれぞれ担当する
- 同一サンプルから両方を解析すれば腫瘍の全体像に近づける
- エクソソームを含めたマルチアナライト解析の研究も進行中
- 検査手順の標準化とコスト削減が今後の焦点になる
リキッドバイオプシーでCTCやctDNAの検査を受ける前に知っておきたいこと
リキッドバイオプシーは画期的な検査法ですが、万能ではありません。検査を受ける前にメリットと限界の両面を正しく把握しておくことで、結果を冷静に受け止められるようになります。
検査の精度には限界がある|偽陰性や偽陽性の可能性
ctDNAの検出感度は腫瘍の種類やステージによって変動します。とくに早期癌や腫瘍量の少ない段階では、ctDNAが十分に放出されず検出できない「偽陰性」が起こりえます。
- 早期癌ではctDNAの血中濃度が低く、検出が難しいことがある
- CTCはEMT(上皮間葉転換)を経た細胞では捕捉率が下がる場合がある
- クローナル造血(CHIP)由来の変異を腫瘍由来と誤認するリスクがある
検査結果の解釈は必ず担当医と一緒に行う
リキッドバイオプシーの結果は、画像検査や病理検査などほかの検査結果と総合して判断する必要があります。ctDNAで変異が見つかったからといって、即座に治療方針が決まるわけではありません。
担当医は患者さんの全身状態や病歴、ほかの検査データを踏まえて判断します。検査結果だけで一喜一憂せず、総合的な評価のなかで位置づけてもらうことが大切です。
検査技術の標準化はまだ途上にある
CTC検出やctDNA解析には複数の技術が存在しますが、施設間で手法が異なるケースがあり、結果の比較が難しいという問題が残っています。国際的な標準化に向けた取り組みが進んでいるものの、現時点では検査を受ける施設の技術水準を確認しておくことが望ましいでしょう。
また、採血後の検体の取り扱い(保存温度や遠心条件など)によっても結果が変動する場合があります。信頼性の高い結果を得るには、適切な検体処理ができる施設を選ぶことも重要です。
よくある質問
CTCとctDNAは同じ血液サンプルから同時に検査できますか?
はい、技術的には同一の採血検体からCTCとctDNAの両方を解析することが可能です。まず全血からCTCを分離し、その後に残った血漿からctDNAを抽出するという手順が研究レベルでは報告されています。
ただし、CTC分離用とctDNA抽出用では推奨される採血管や前処理条件が異なることもあるため、両方を同時に解析する場合は事前に検査施設へ確認することをおすすめします。
ctDNA検査は早期癌でも検出できますか?
ctDNA検査は進行癌での検出率が高い一方、早期癌では腫瘍量が少なくctDNAの血中濃度が低いため、検出が難しいケースがあります。研究データでは、ステージIの癌ではctDNAの感度が低下する傾向が報告されています。
ただし、複数のバイオマーカーを組み合わせたマルチがん早期検出テスト(MCEDテスト)の開発が進んでおり、将来的に早期癌の検出精度は向上していくと見込まれています。現時点では、ctDNA検査だけで早期癌を見つけ出すには限界があることを知っておいてください。
CTC検査はどのような癌で活用が進んでいますか?
CTC検査の臨床研究が特に盛んなのは乳癌、前立腺癌、大腸癌といった固形腫瘍です。なかでも転移性乳癌では、治療前のCTC数が予後と強く関連することが大規模な臨床データで示されています。
肺癌や膀胱癌、肝細胞癌でもCTC検出に関する報告が増えていますが、癌の種類によってCTCが血中に放出される量や検出しやすさが異なります。すべての固形腫瘍で同じ精度が得られるわけではない点にご留意ください。
ctDNA検査の結果から治療薬を選ぶことはできますか?
ctDNA検査によって腫瘍のドライバー変異(EGFR変異やALK融合遺伝子など)が検出された場合、対応する分子標的薬の選択に役立てられる場合があります。実際に、非小細胞肺癌ではctDNAによるEGFR変異検査が治療選択に活用されています。
ただし、ctDNA検査の結果だけで治療方針が決定されるわけではなく、組織検査や画像検査などの結果と合わせて担当医が総合的に判断します。あくまで治療方針を検討するための材料の一つとしてご理解ください。
リキッドバイオプシーは組織生検の代わりになりますか?
現時点では、リキッドバイオプシーが組織生検を完全に代替できる段階には至っていません。組織生検は腫瘍の確定診断において依然としてゴールドスタンダード(標準的な基準)とされており、病理学的な評価はリキッドバイオプシーでは行えません。
一方で、組織の採取が困難な部位に腫瘍がある場合や、繰り返しの検査が必要な場面では、リキッドバイオプシーが有効な補助手段として機能します。両者は代替ではなく補完の関係にあると考えていただくのがよいでしょう。
References
Wang, X., Wang, L., Lin, H., Zhu, Y., Huang, D., Lai, M., Xi, X., Huang, J., Zhang, W., & Zhong, T. (2024). Research progress of CTC, ctDNA, and EVs in cancer liquid biopsy. Frontiers in Oncology, 14, 1303335. https://doi.org/10.3389/fonc.2024.1303335
Nikanjam, M., Kato, S., & Kurzrock, R. (2022). Liquid biopsy: Current technology and clinical applications. Journal of Hematology & Oncology, 15(1), 131. https://doi.org/10.1186/s13045-022-01351-y
Alix-Panabières, C., & Pantel, K. (2021). Liquid biopsy: From discovery to clinical application. Cancer Discovery, 11(4), 858–873. https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-20-1311
Pantel, K., & Alix-Panabières, C. (2019). Liquid biopsy and minimal residual disease — latest advances and implications for cure. Nature Reviews Clinical Oncology, 16(7), 409–424. https://doi.org/10.1038/s41571-019-0187-3
Schwarzenbach, H., Hoon, D. S. B., & Pantel, K. (2011). Cell-free nucleic acids as biomarkers in cancer patients. Nature Reviews Cancer, 11(6), 426–437. https://doi.org/10.1038/nrc3066
Ignatiadis, M., Sledge, G. W., & Jeffrey, S. S. (2021). Liquid biopsy enters the clinic — implementation issues and future challenges. Nature Reviews Clinical Oncology, 18(5), 297–312. https://doi.org/10.1038/s41571-020-00457-x
Heitzer, E., Haque, I. S., Roberts, C. E. S., & Speicher, M. R. (2019). Current and future perspectives of liquid biopsies in genomics-driven oncology. Nature Reviews Genetics, 20(2), 71–88. https://doi.org/10.1038/s41576-018-0071-5
Alix-Panabières, C., & Pantel, K. (2016). Clinical applications of circulating tumor cells and circulating tumor DNA as liquid biopsy. Cancer Discovery, 6(5), 479–491. https://doi.org/10.1158/2159-8290.CD-15-1483
Parums, D. V. (2025). A review of circulating tumor DNA (ctDNA) and the liquid biopsy in cancer diagnosis, screening, and monitoring treatment response. Medical Science Monitor, 31, e947889. https://doi.org/10.12659/MSM.947889
Keller, L., & Pantel, K. (2019). Unravelling tumour heterogeneity by single-cell profiling of circulating tumour cells. Nature Reviews Cancer, 19(10), 553–567. https://doi.org/10.1038/s41568-019-0180-2
この記事を書いた人 Wrote this article
前田 祐助 医学博士 / 医師
慶應義塾大学医学部大学院にて、がんの発生メカニズム(発癌機構)や、慢性炎症と腫瘍の関係性に関する基礎研究に従事し、医学博士号を取得。 特に、胃がんにおける炎症微小環境の解析や、細胞シグナル伝達(COX-2/PGE2経路など)による腫瘍形成の研究において実績を持つ。 現在は、大学病院や研究機関で培った「根拠(エビデンス)に基づく医療」の視点を活かし、疾患の早期発見や予防医療の啓発活動を行っている。 【保有資格・所属】 医学博士(慶應義塾大学)/ 医師免許 / 日本内科学会 / 日本医師会認定産業医